μCaler® HotSpot Panel v1.0 靶向肿瘤突变“热点”区域,涉及致癌和肿瘤抑制相关的 49 个热点突变基因,探针覆盖基因组约 25 Kb 区域。
该 Panel 与 μCaler® Hybrid Capture System 配套使用。基于全新的 μCaler® 靶向富集系统, μCaler® HotSpot Panel v1.0 提升了捕 获效率,捕获表现稳定优异且大幅度减少了实验所需时间,实现更高效的测序并节省成本。
AKT1 | ALK | APC | AR | ARAF | ATM | BRAF | CDKN2A | CHEK2 | CTNNB1 |
DDR2 | EGFR | ERBB2 | ERBB3 | ESR1 | FBXW7 | FGFR1 | FGFR2 | FGFR3 | FGFR4 |
FLT3 | GNA11 | GNAQ | GNAS | HRAS | IDH1 | IDH2 | KIT | KRAS | MAP2K1 |
MAP2K2 | MET | MTOR | NRAS | NTRK1 | NTRK3 | PDGFRA | PIK3CA | PTCH1 | PTEN |
RAF1 | RET | ROS1 | SF3B1 | SMAD4 | SMO | STK11 | TP53 | TSC1 |
捕获表现
图 1. μCaler® HotSpot Panel v1.0 的捕获表现。LDT OncoOne 泛肿瘤 gDNA 标准品 (LDT Bioscience,LDT900) 利用 NadPrep® 快速 DNA 酶切文库构建试剂盒 v2 搭配 NadPrep® Universal Stubby Adapter (UDI) Module 进行预文库构建; 500 ng/预文库投入,参照 μCaler® 杂交捕获指南。利用 BWA 比对到参考基因组 hg38,On-target 按照 reads 数计算。A. 捕获数据的中靶率、比对率及靶区域覆盖度;B. 靶区域覆盖均一性。
注:LDT OncoOne 泛肿瘤 gDNA 标准品 (LDT Bioscience, LDT900) 包含阴性质控品 (LDT Bioscience,LDT898) 和阳性质控品 (LDT Bioscience,LDT899) 。测序模式为 Illumina Novaseq 6000,PE150。
变异分析
图 2. μCaler® HotSpot Panel v1.0 捕获数据中变异频率与标准品频率的一致性。利用 NadPrep® 快速 DNA 酶切文库构建试剂盒 v2 构建预文库,以 μCaler® HotSpot
Panel v1.0 完成杂交捕获,Vardict
1.5.1 进行变异分析。测序模式:Illumina
Novaseq 6000,PE150。
注:样本为 OncoOne 泛肿瘤 gDNA 标准品 (LDT Bioscience,LDT900) 。
货号 |
管盖 颜色 |
产品名称 |
包装 体积 |
包装/储存温度 |
1101402 |
|
μCaler® HotSpot Panel v1.0, 16 rxn |
40 μL |
-20℃ |
1101401 |
|
μCaler® HotSpot Panel v1.0, 96 rxn |
210 μL |
-20℃ |
转录组测序 (RNA-Seq) 文库制备一般分为常规性和链特异性两类,其核心差异在于是否在测序文库中保留转录本的方向性信息。其中,链特异性文库在制备过程中保留了转录本的方向性,测序与下游分析时可判定转录本来源于 DNA 的正义链还是反义链;而常规性文库在 cDNA 合成过程中会丢失方向性信息,测序数据无法直接区分转录方向。与常规性 RNA-Seq 相比,链特异性 RNA-Seq 更能准确地统计转录本数量,明确基因结构,同时识别反义转录本以及发现更多新转录本,因此是研究基因结构与表达调控的重要手段。总体而言,文库制备方法的选择应基于实验目的、成本预算及参考转录组的可用性等因素;若需获取转录本方向性信息,应优先选择链特异性文库。无论选择何种方案,均应严格按照试剂盒使用说明书执行相应操作以确保数据质量。
产品 |
货号 |
μCaler® HotSpot Panel v1.0, 16 rxn |
1101402 |
μCaler® HotSpot Panel v1.0, 96 rxn |
1101401 |
我们的工作人员将在1个工作日内与您取得联系。
如果有任何问题,欢迎联系
400 8717 699 或 support@njnad.com。